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DNA序列的PCR引物设计

02月25日 编辑 39baobao.com

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疯了………………你这个是要实验用还是要交作业啊…………

引物设计首先需要找到你要P出来的序列。让我们假设这一段就是你要P的东西………………

第二步就是在该序列或者附近直接用原序列做引物。你这个为例的话,5'就是TCGATG,而3'就是TAGGCT。注意5'就是原序列而3'则是互补序列。还需要注意的是,两个primer都是5'-3'的写法。

第三步则应该是在全序列中寻找这两个引物是否会出现错配,以及错配的严重情况。错配严重的在PCR之后会出现较小的杂带。

还有就是引物自身会不会出现发夹(就是引物自己的局部会发生错配),两条引物会不会形成互配等等(这些都是不存在为最好的)。这两个会影响PCR产物的量,严重的会没有产物形成。

因为是做PCR的,还需要检查两条引物的TM(变性解聚需要的最低温度)值是否接近(接近为好)。

真正设计引物的时候经常还需要考虑加入酶切位点,这样的话,酶切位点因为是回文结构,错配就会无法避免,不用考虑了。

基本上设计引物的要点就是这些了。有什么不懂的你再补充。

回答补充:

至少我老师给我讲引物设计的时候,没有说过开头能否使用CG之类的东西……

关于引物中GC的问题,一般说其含量在40~60%左右时,P的效果最好。但是也有人用实验证明小于或大于这个范围同样可以做的很好。

上次还忘记说了,引物设计中比较关键的是3'端。那里的序列是不能动的,因为P的时候就是3'端的紧密结合开始的。相对的,如果要做任何改动,可以考虑5'端,但也最好不要直接从头开始改。留下几个碱基作为保护碱基可以提高引物的效果。

已知动物PRL基因序列如何设计引物本站

2,上游引物设计:选取正向5'-3'的基因序列约23bp左右,copy下来;在这段序列的5'端加上你的上游酶切位点(一般6bp),再在之前加入两个任意碱基作为保护碱基;序列为:保护碱基(2bp)+上游酶切位点(6bp)+基因起始序列5'-3',引物碱基总长约28-30bp.

3,下游引物设计:将序列反相互补,得到互补链序列,选取5'-3'的基因序列约20bp左右,同样在5'端加上下游酶切位点和保护碱基;一般情况下还需要在酶切位点和基因之间加上stop codon。序列为:保护碱基(2bp)+下游酶切位点(6bp)+stop codon(3bp)+基因互补序列起始序列5'-3',引物碱基总长约28-30bp

4,检查:(1)引物长度;(2)上游酶切位点是否移码,如果移码,则应增加1-2个碱基恢复读码框;(3)如果下游没有设计终止密码子,也应检测是否移码,PCR能否顺利终止,不行则休正;(4)退火温度,一对引物的退火温度不能相差太大,否则应调节碱基使之满足要求。

怎么设计引物

PCR引物又称为寡核苷酸引物,也就是RNA,是由人工合成的,PCR引物通常是一对,引物1和引物2。由于DNA聚合酶只能从核苷酸链的5'端到3'端进行复制,也就是只能识别3'的尾端,而且只能把核苷酸连到已经和DNA模板互补产生的多核苷酸链上,所以引物1和2分别于双链DNA的两条链的尾部(就是末尾是3'端的那一边)结合,为那些脱氧核苷酸提供3'的末端,就相当于开了个头。然后在DNA聚合酶的作用下合成两条新链。而那段引物就成了新链的一部分。 其实在生物体内的DNA复制也是这样的一个过程,只是引物是人体自身合成的 引物设计原则 * 序列选取应在基因的保守区段 * 避免引物自身或与引物之间形成4个或4个以上连续配对,避免引物自身形成环状发卡结构 * 典型的引物18到24个核苷长。

引物需要足够长,保证序列独特性,并降低序列存在于非目的序列位点的可能性。但是长度大于24核苷的引物并不意味着更高的特异性。较长的序列可能会与错误配对序列杂交,降低了特异性,而且比短序列杂交慢,从而降低了产量。 * Tm值在55-65℃(因为60℃核酸外切酶活性最高),GC含量在40%-60% * 引物之间的TM相差避免超过2℃ * 引物的3'端避免使用碱基A,引物的3'端避免出现3个或3个以上连续相同的碱基 * 为避免的扩增,引物设计最好能跨两个外显子。 * Taqman探针技术要求片段长度在50bp-150bp * 引物末端(最后5个核苷酸)不能有超过2个的G和C。

以下为关联文档:

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