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请教高手如何设计引物?能不能直接copy文献上的引物

02月10日 编辑 39baobao.com

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1.找出这种细胞物种的PTN全长核苷酸序列

2.采用primer premier 5.0软件设计

引物设计应注意如下要点:

1. 引物的长度一般为15-30 bp,常用的是18-27 bp,但不应大于38,因为过长会导致其延伸温度大于74℃,不适于Taq DNA聚合酶进行反应[2]。

2. 引物序列在模板内应当没有相似性较高,尤其是3'端相似性较高的序列,否则容易导致错配。引物3'端出现3个以上的连续碱基,如GGG或CCC,也会使错误引发机率增加[2]。

3. 引物3'端的末位碱基对Taq酶的DNA合成效率有较大的影响。不同的末位碱基在错配位置导致不同的扩增效率,末位碱基为A的错配效率明显高于其他3个碱基,因此应当避免在引物的3'端使用碱基A[3][4]。另外,引物二聚体或发夹结构也可能导致PCR反应失败。5'端序列对PCR影响不太大,因此常用来引进修饰位点或标记物[2]。

4. 引物序列的GC含量一般为40-60%,过高或过低都不利于引发反应。上下游引物的GC含量不能相差太大[2][5]。

5. 引物所对应模板位置序列的Tm值在72℃左右可使复性条件最佳。Tm值的计算有多种方法,如按公式Tm=4(G+C)+2(A+T),在Oligo软件中使用的是最邻近法(the nearest neighbor method) [6][7]。

6. ΔG值是指DNA双链形成所需的自由能,该值反映了双链结构内部碱基对的相对稳定性。应当选用3'端ΔG值较低(绝对值不超过9),而5'端和中间ΔG值相对较高的引物。引物的3'端的ΔG值过高,容易在错配位点形成双链结构并引发DNA聚合反应[6]。

7. 引物二聚体及发夹结构的能值过高(超过4.5kcal/mol)易导致产生引物二聚体带,并且降低引物有效浓度而使PCR反应不能正常进行[8]。

8. 对引物的修饰一般是在5'端增加酶切位点,应根据下一步实验中要插入PCR产物的载体的相应序列而确定。

如果文献上的这个基因跟你是同一物种来源的话 是可以运用别人的引物

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